Resumen:
El botete diana Sphoeroides annulatus (familia Tetraodontidae) se distribuye desde California (USA) a Perú (Robertson y Allen, 2006), incluyendo el Golfo de California (México). Es una especie que cuenta con un elevado precio en los mercados locales y es considerada como especie candidata a la acuacultura en las costas del Pacífico Mexicano (Chávez-Sánchez et al., 2008).
Esto ha generado un incremento en desarrollar un programa de cultivo como un alternativa económica tanto por los sectores privados como públicos. Recientemente, algunos aspectos de su cultivo han sido reportados, incluyendo algunas estrategias de cultivo y requerimientos nutricionales (Chávez-Sánchez et al., 2008; García-Ortega, 2009), sin embargo, aún no existen reportes sobre el efecto de la densidad de cultivo en el crecimiento de juveniles del botete diana en condiciones de cultivo intensivo.
Una óptima densidad de cultivo es un aspecto importante en acuacultura ya que representa una forma de optimizar la productividad de los sistemas de cultivo al promover mayores tasas de crecimiento. Sin embargo, la densidad óptima de cultivo difiere entre las especies y varía en función a la edad, etapa de desarrollo y dieta, lo cual dificulta las generalizaciones. Por otro lado, varios estudios han resaltado los efectos adversos de una elevada densidad sobre el crecimiento y la supervivencia (Canario et al., 1998; Ewa-Oboho and Enyenihi, 1999; Irwin et al., 1999; Fernandes-Correa and Ronzani-Cerqueira, 2007; Tremblay-Bourgeois et al., 2009), la resistencia al estrés (Vijayan and Leatherland, 1988) y el metabolismo energético (Vijayan et al., 1990).
Metodología
El experimento se realizará en la Unidad Piloto de Maricultivos del Centro Interdisciplinario de Ciencias Marinas. Juveniles de 40 días de edad serán transferidos del sistema de crianza larvaria a un sistema cerrado de cultivo de juveniles, el cual cuenta con 12 tanques de circulares de fibra de vidrio con un volumen 600L. Previo al inicio del experimento se realizará una biometría de los organismos, separandolos por talla y longitud. Se estimará el efecto de dos densidades de cultivo: 0.6 (baja densidad, BD) y 2.0 (alta densidad AD) juveniles por litro, lo cual corresponden a 410 y 1225 organismos por taque. Cada tratamiento contará con tres réplicas.
Las condiciones de cultivo en el sistema de cultivos de juveniles serán de 26ºC, salinidad de 34 ups, fotoperíodo de 12:12 Luz:obscuridad. Los peces serán alimentados tres veces al día a intervalos de cuatro horas, durante las horas de luz. La cantidad de alimento a suministrar será el correspondiente al 6% de la biomasa total del tanque y se distribuirá en cada una de las 3 alimentaciones diarias. El alimento a suministrar será una dieta artificial comercial, comúnmente utilizada en el cultivo de peces: nutripec 2506 Ap de Purina|? con un 25% de proteína y 6% de lípidos.
Se realizarán biometrías cada diez días, durante un total de tres meses: 30 juveniles de cada tanque serán muestreados al azar, anesteziados con 2-fenoxietanol (400 ppm). Cada biometría consiste en evaluar el peso individual en una balanza analítica (precisión 0.01 g) y medidos (longitud estándar) con un vernier digital (precisión de 0.01 mm) y su posterior regreso a los tanques correspondientes.
El crecimiento se expresará como la tasa específica de crecimiento (SGR, % día), entre los intervalos de cada biometría (10 días) y como la tasa de crecimiento total a lo largo de todo el periodo de estudio (90 días). La tasa de supervivencia (%) será evaluada al final del experimento mediante conteo directo de los peces en cada tanque. El coeficiente de variación del peso (CV, %) dentro de cada tanque será calculado durante cada biometría y se utilizará para establecer la variación del tamaño de los peces. También se estimará el factor de condición de Fulton (K) mediante la fórmula: K = peso húmedo (mg) / longitud3 (mm) * 100. Utilizando el modelo potencial (W = aLb) se evaluará la relación entre peso (W) y longitud estándar(L) durante el periodo de estudio.
Al final del bioensayo de crecimiento (3 meses de cultivo), todos los juveniles serán contados y separados por talla. Se identificarán y se separarán clases de talla, midiendo y pesando a 10 individuos de cada clase de talla. Cinco individuos de cada clase de talla serán recolectados al azar y fijados con solución Davidson. Se obtendrán laminillas histológicas (espesor 5 um) y serán teñidas con la técnica de hematoxilina-eosina para describir las características generales del hígado, tubo digestivo y ojos. Se tomarán fotografías digitales de las laminillas histológicas para medir el área/diámetro de núcleo de los hepatocitos y altura de los enterocitos en ambos intestinos, utilizando en programa de análisisi de imágenes Image Pro Plus v5).
Los datos expresados en % serán transformados previo al análisis estadístico. Se aplicarán pruebas de normalidad y homogeneidad de varianzas y si se cumplen con estos supuestos, las diferencias en crecimiento, factor de condición y características histiológicas serán evaluadas con una ANOVA de una vía, con la densidad de cultivo como factor, en nivel de significancia será p < 0.05 en todos los análisis.
Referencias
Canario, A.V.M., Conceca, J., Power, D.M., Ingleton,P.M. 1998. The effect of stocking density on growth in the gilthead sea-bream, Sparus aurata (L.). Aquaculture Research 29, 177-181.
Chávez-Sánchez, M.C., Alvarez-Lajonchere, L., Abdo-de la Parra, M.I., García-Aguilar, N. 2008. Advances in the culture of the Mexican bullseye puffer fish Sphoeroides annulatus, Jenyns (1842). Aquaculture Research 39, 718-730.
Ewa-Oboho, I.O., Enyenihi, U.K. 1999. Aquaculture implications of growth variation in the African catfish: Heterobranchus longifilis (Val.) reared under controlled conditions. Journal of Applied Ichthyology 15, 111-115.
Fernandes-Correa, C., Ronzani-Cerqueira, V. 2007. Effects of stocking density and size distribution on growth, survival and cannibalism in juvenile fat snook (Centropomus parallelus Poey). Aquaculture Research 38, 1627-1634.
García-Ortega, A. 2009. Nutrition and feeding research in the spotted rose snapper (Lutjanus guttatus) and bullseye puffer (Sphoeroides annulatus), new species for marine aquaculture. Fish Physiology and Biochemistry 35, 69-80.
Irwin, S., O?Halloran, J., FitzGerald, R.D. 1999. Stocking density, growth and growth variation in juvenile turbot, Scophthalmus maximus (Rafinesque). Aquaculture 178, 77-88.
Robertson, D.A., Allen, G.R. 2006. Shore fishes of the Tropical Eastern Pacific: An Information System. Version 2.0.Smithsonian Tropical Research Institute, Balboa, Panama.
Tremblay-Bourgeois, S., Le Francois, N., Roy, R., Benfey, T., Imsland, A. 2009. Effect of rearing density on the growth and welfare indices of juvenile spotted wolfish, Anarhichas minor (Olafsen). Aquaculture Research.
Vijayan, M.M., Leatherland, J.F. 1988. Effect of stocking density on the growth and stress-response in brook charr, Salvelinus fontinalis. Aquaculture 75, 159-170.
Vijayan, M.M., Ballantyne, J.S., Leatherland, J.F. 1990. High stocking density alters the energy metabolism of brook charr, Salvelinus fontinalis. Aquaculture 88, 371-381.